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通用型彩色DNA純化回收試劑盒 核酸提取
簡要描述:

本試劑盒既能從TAE 或TBE 瓊脂糖凝膠中回收 DNA 片段,又能用于直接純化 PCR 產物,滿足多種實驗需要。Buffer GS 溶液中含有 pH 指示劑,可根據顏色來判斷溶膠或 PCR 產物回收是否達到優良狀態。
通用型彩色DNA純化回收試劑盒 核酸提取

  • 產品型號:43018
  • 廠商性質:經銷商
  • 更新時間:2025-07-17
  • 訪  問  量:411
詳情介紹

Universal Color DNA Purification Kit

通用型彩色 DNA 純化回收試劑盒


通用型彩色DNA純化回收試劑盒 核酸提取


目錄號:43018

產品內容:

產品組

43018-50

43018-100

43018-200

Buffer BL

25 ml

50ml

100 ml

Buffer GS

25 ml

50ml

100 ml

Buffer   WB2

15 ml

30ml

2×30 ml

Buffer EB

10 ml

15ml

30 ml

Spin Column With Collection Tubes

50

100

200

自備試劑:

無水乙醇

保存條件:

室溫(15 ~ 25℃)


具體產品的參數以收到產品說明書的參數為準 


產品簡介:

本試劑盒既能從TAE TBE 瓊脂糖凝膠中回收 DNA 片段,又能用于直接純化 PCR 產物,滿足多種實驗需要。Buffer GS 溶液中含有 pH 指示劑,可根據顏色來判斷溶膠或 PCR 產物回收是否達到優良狀態。使用本產品可回收 100bp~8kb 大小的DNA 片段,回收率可達 80%,該試劑盒操作簡便,得到的 DNA 片段可用于酶切、連接、測序等實驗。

產品特點:

1.        快速:步驟少,操作簡便,整個操作僅需 15 分鐘。

2.        高效:每個離心吸附柱可吸附 10 ug 以上的 DNA 片段,回收效率在 85%以上。

注意事項:

1.   Buffer BL 的加入能夠改善吸附柱的吸附能力并提高吸附柱的均一性和穩定性,消除高溫潮濕或其他不良環境因素對吸附柱造成的影響。

2.   使用前請先檢查Buffer BL、Buffer GS 是否出現渾濁,如有混濁現象,可在 37℃水浴中加熱幾分鐘,即可恢復澄清。

3.  溶液Buffer GS 含有 pH 指示劑,為黃色,指示 pH≤7.5

4.    切膠時,紫外照射時間應盡量短,以免對 DNA 造成損傷。

5.    回收率與初始 DNA 量和洗脫體積有關,初始量越少、洗脫體積越小,回收率越低。

操作步驟:

第一次使用前,請先在 Buffer WB2 中加入無水乙醇,并打對勾標記,加入體積請參照瓶上的標簽。

一、從瓊脂糖凝膠中回收DNA 片段

1.   柱平衡:向吸附柱中(吸附柱放入收集管中)加入 400 ul Buffer BL,12,000 rpm 離心 1 min,棄濾液,將吸附柱重新放回收集管中。(請使用當天處理過的柱子)

2.    切膠:在長波紫外燈下,用干凈刀片將目的 DNA 條帶切下,盡量切除不含 DNA 的凝膠。

3.    稱重:將切下的含有目的 DNA 條帶的凝膠,放入 1.5 ml 離心管中,稱取凝膠重量(去除空管重量)。如果凝膠重量為 100mg,其體積可視為 100ul。

4.    溶膠:加入等體積 Buffer GS,60℃水浴,每隔 2 ~ 3 min 上下振蕩,直到凝膠wan全溶解。

如果凝膠濃度大于 2%,應加入 2 倍體積 Buffer GS。對于回收<300 bp 的小片段,可在凝膠wan全溶解后,再加入 0.5 倍膠塊體積的異丙醇以提高回收率。

5.   吸附:待溶液冷卻至室溫后加入吸附柱中,室溫靜置 2 min,然后 12,000 rpm 離心 1 min,棄濾液。

如果總體積超過 750 ul,可分 2 次將溶液加入同一離心吸附柱中)

6.    漂洗:加入 500 ul 漂洗液Buffer WB2,12,000 rpm 離心 1 min,棄濾液。

7.    二次漂洗:重復操作步驟 6

8.    干燥:將吸附柱放回收集管中, 12,000 rpm 離心 2 min,甩干膜上殘留的乙醇,防止其抑制下游反應。

9.   回收:將離心吸附柱置于一個新的 1.5 ml 離心管中,在吸附柱中央加入 30 ~ 50 ul 洗脫液 Buffer EB,室溫放置 2 min,12,000 rpm 離心 1 min 收集 DNA 片段。

注意:為增加回收效率,可將洗脫液在 65℃預熱,也可將得到的溶液重新加入到離心管中,室溫放置 2 min,再次離心收集。

二、 從 PCR 反應液或酶切反應液中回收 DNA 片段

1.   柱平衡:向吸附柱中(吸附柱放入收集管中)加入 400 ul 平衡液Buffer BL,12,000 rpm 離心 1 min,棄濾液,將吸附柱重新放回收集管中。(請使用當天處理過的柱子)

2.   加結合液:估計PCR 反應液或酶切反應液的體積,向其中加入等體積溶液Buffer GS,充分混勻。

注意:對于回收小于 150bp 的小片段可將溶液 Buffer GS 的體積增加到 3 倍以提高回收率)

3.   吸附:將上一步所得溶液加入一套吸附柱中,室溫放置 2 min,12,000 rpm 離心 1 min,棄濾液。

( 注意:吸附柱容積為 750ul,若樣品體積大于 750ul,可分批加入

4.    漂洗:加入 500ul Buffer WB2,12,000 rpm 離心 1 min,棄濾液。

5.    二次漂洗:重復操作步驟 4

6.   干燥:將吸附柱放回收集管中, 12,000 rpm 離心 2 min,甩干膜上殘留的乙醇,防止其抑制下游反應。

7.   洗脫:將離心吸附柱置于一個新的 1.5 ml 離心管中,在吸附柱中央加入 30 ~ 50 ul 洗脫液Buffer EB,室溫放置 2 min。12,000 rpm 離心 1 min,收集 DNA 片段。(注意:為增加回收效率,可將洗脫液在 60℃預熱,也可將得到的溶液重新加入到離心管中,室溫放置 2 min,再次離心收集。


通用型彩色DNA純化回收試劑盒 核酸提取


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