丙酮酸激酶（Pyruvate kinase，PK）試劑盒說明書

分光光度法 50 管/48 樣

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

PK（EC 2.7.1.40）廣泛存在于動物、植物、微生物和培養細胞中，催化糖酵解過程中的最后一步反應，是糖酵解過程中的主要限速酶之一，也是產生ATP 的關鍵酶之一，因此測定PK 活性具有重要意義。

測定原理：

PK 催化磷酸烯醇式丙酮酸和ADP 生成ATP 和丙酮酸，乳酸脫氫酶進一步催化NADH 和丙酮酸生成乳酸和NAD⁺，在 340nm 下測定NADH 下降速率，即可反映 PK 活性。

丙酮酸激酶試劑盒 糖酵解系列-常備現貨

組成：

自備儀器和用品：

紫外分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調式移液器、1ml 石英比色皿、研缽、冰和蒸餾水

具體產品的參數以收到產品說明書的參數為準

樣本的前處理:

1、細菌或培養細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量（10⁴ 個）：提取液體積（ml）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細菌或細胞加入 1ml 提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率 20％或 200W，超聲 3s，間隔 10s，重復 30 次）；8000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

2、組織：按照組織質量（g）：提取液體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 提取液），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

3、血清（漿）樣品：直接檢測。

測定步驟:

1、分光光度計預熱 30min 以上，調節波長至 340nm，蒸餾水調零。

2、樣本測定

（1） 試劑二的配制：臨用前取試劑二一瓶，加入 22.5ml 試劑一和 2.65ml 蒸餾水充分溶解，置于 37℃（哺乳動物）或 25℃（其它物種）水浴 5min；現配現用。

（2） 試劑三的配制：臨用前取試劑三一支，加入 1.5ml 蒸餾水充分溶解待用；現配現用。

（3） 在 1ml 石英比色皿中加入 50μl 樣本、50μl 試劑三和 900μl 試劑二，混勻，立即記錄 340nm 處 20s 時的吸光值A1 和 2min20s 后的吸光值A2，計算ΔA=A1-A2。

PK 活性計算:

1、血清（漿）中 PK 活力的計算:

單位的定義：每毫升血清（漿）每分鐘消耗 1 nmol 的NADH 定義為一個酶活力單位。

PK（nmol/min/ml）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×10⁹]÷V 樣÷T=2613×ΔA 2、組織、細菌或細胞中 PK 活力的計算:

（1） 按樣本蛋白濃度計算：

單位的定義：每mg 組織蛋白每分鐘消耗 1 nmol 的NADH 定義為一個酶活力單位。

PK（nmol/min /mg prot）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×10⁹]÷(V 樣×Cpr) ÷T=2613×ΔA÷Cpr

（2） 按樣本鮮重計算：

單位的定義：每g 組織每分鐘消耗 1 nmol 的NADH 定義為一個酶活力單位。

PK（nmol/min /g 鮮重）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×10⁹]÷(W× V 樣÷V 樣總)÷T=2613×ΔA÷W

（3） 按細菌或細胞密度計算：

單位的定義：每 1 萬個細菌或細胞每分鐘消耗 1 nmol 的NADH 定義為一個酶活力單位。

PK（nmol/min /10⁴ cell）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×10⁹]÷(500×V 樣÷V 樣總)÷T=5.226×ΔA

V 反總：反應體系總體積，9.75×10^-4 L；ε：NADH 摩爾消光系數，6.22×10³ L / mol /cm；d：比色皿光徑， 1cm；V 樣：加入樣本體積，0.03 ml；V 樣總：加入提取液體積，1 ml；T：反應時間，2min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/ml；W：樣本質量，g；500：細菌或細胞總數，500 萬。

丙酮酸激酶試劑盒 糖酵解系列-常備現貨