單寧酶（Tannase，TAN）試劑盒說明書

分光光度法 50 管/24 樣

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

單寧酶全稱是單寧酯酰水解酶(Tannase，EC 3.1.1.20)，它可以水解沒食子酸單寧中的酯鍵和縮酚羧鍵，生成沒食子酸和葡萄糖。

測定原理：

使用抗氧化劑沒食子酸丙酯（PG）作為單寧酶酶促反應的底物，在 270nn 下測定底物PG 反應前后的光密度變化,計算單寧酶酶活力。

單寧酶（Tannase，TAN）試劑盒  氧化系列

試劑的組成和配制：

試劑二：粉劑×1 支，4℃保存；臨用前每支加入 3ml 試劑一，充分溶解后備用；用不完的試劑 4℃保存；

自備儀器和用品：

紫外分光光度計、水浴鍋、臺式離心機、可調式移液器、1 ml 石英比色皿、研缽、冰、蒸餾水

粗酶液提取：

按照組織質量（g）：試劑一體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 試劑一），進行冰浴勻漿。10000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

測定步驟：

1、分光光度計預熱 30min 以上，調節波長至 270nm，蒸餾水調零。

2、加樣表

混勻，40℃準確保溫 10 min 后，置 95℃水浴中 10 min（蓋緊，防止水分散失），冷卻

混勻，270nm 處讀取各管吸光值。計算ΔA=A 對照-A 測定。每個測定管需設個一個對照管。

注意事項：

可以在不同對照管中加入不同樣品的粗酶液，然后集中進行 5min 95℃沸水浴處理。

TAN 活力單位的計算：

標準條件下測定回歸方程為 y = 0.0058x + 0.0044，R2 = 0.9994；x 為PG 含量（µmol/L），y 為吸光值。

1、按樣本體積計算

單位的定義：40℃下每毫升粗酶液每分鐘水解減少 0.01µmol 底物PG 所需要的酶量定義為一個酶活單位。

TAN 活性(µmol/min/ml)=(ΔA-0.0044）÷0.0058÷1000×V 反總÷0.01÷V 樣÷T

=34.48×( ΔA-0.0044）

2、按照蛋白濃度計算

單位的定義：40℃下每毫克蛋白每分鐘水解減少 0.01µmol 底物PG 所需要的酶量定義為一個酶活單位(U)。

TAN 活性((µmol/min/mg prot)=(ΔA-0.0044）÷0.0058÷1000×V 反總÷0.01÷(V 樣×Cpr)÷T

=34.48×(ΔA-0.0044）÷Cpr

3、按照樣本鮮重計算

單位的定義：40℃下每克樣品每分鐘水解減少 0.01µmol 底物PG 所需要的酶量定義為一個酶活單位(U)。

TAN 活性(µmol/min/g 鮮重)=(ΔA-0.0044）÷0.0058÷1000×V 反總÷0.01÷(V 樣÷V 樣總×W)÷T

=34.48×(ΔA-0.0044）÷W

V 反總：反應體系總體積，1ml； V 樣：加入樣本體積，0.05ml；V 樣總：加入提取液體積，1 ml；T：反應時間，10min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/ml；W：樣本質量，g。

單寧酶（Tannase，TAN）試劑盒  氧化系列