糖原染色是病理學中常規的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技術顯示黏蛋白，該法常用來顯示糖原和其他多糖，該染色液不僅能夠顯示糖原，還能顯示中性黏液性物質和某些酸性物質，以及軟骨、垂體、霉菌、真菌、色素、淀粉樣物質、基底膜等。 
糖原D-PAS染色試劑盒(淀粉mei消化法) 特殊

諾博萊德  糖原D-PAS染色試劑盒(淀粉mei消化法)，Periodic Acid Schiff Diastase(D-PAS) Stain Kit

糖原D-PAS染色試劑盒(淀粉mei消化法) 特殊

產品貨號：G9060

產品名稱：糖原D-PAS染色試劑盒(淀粉mei消化法)，Periodic Acid Schiff Diastase(D-PAS) Stain Kit

產品規格：5*50ml / 5*100ml

產品簡介：

中文名稱：糖原D-PAS染色試劑盒(淀粉mei消化法)

英文名稱：Periodic Acid Schiff Diastase(D-PAS) Stain Kit

規格：5*50ml / 5*100ml

儲存條件：2-8℃，避光保存，有效期6個月。

具體產品的參數以收到產品說明書的參數為準

NobleRyder G9060 糖原D-PAS染色試劑盒(淀粉mei消化法)，Periodic Acid Schiff Diastase(D-PAS) Stain Kit產品介紹

糖原染色是病理學中常規的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技術顯示黏蛋白，該法常用來顯示糖原和其他多糖，該染色液不僅能夠顯示糖原，還能顯示中性黏液性物質和某些酸性物質，以及軟骨、垂體、霉菌、真菌、色素、淀粉樣物質、基底膜等。 
    過碘酸（又稱高碘酸）是一種強氧化劑，它能氧化糖類及有關物質中的1，2-乙二醇基，使之變為二醛，醛與Schiff試劑能結合成一種品紅化合物，產生紫紅色。由于高碘酸還可氧化細胞內其他物質，使用時應注意選擇好高碘酸濃度和氧化時間，使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基，又不至于過氧化，這是很關鍵的步驟。 
    PAS技術是wei一可檢測不同種類的黏液物質（如糖原、黏蛋白和糖蛋白）的方法，但PAS技術卻不能區別黏蛋白和糖原。若要準確鑒別黏液物質（如黏蛋白和糖原），需加入糖原消化步驟。大多數情況下可用α-淀粉mei或麥芽淀粉mei來催化糖原的糖苷鍵水解。形成水溶性的雙糖-麥芽糖，在應用PAS技術之前將糖原從組織切片上除去。人類的唾液被認為是消化糖原的一種有效手段，但是出于安全以及缺乏標準唾液的考慮，不主張應用唾液。
    糖原D-PAS染色液的特點在于糖原PAS染色之前經淀fen酶處理，糖原消化時需要兩張相同的切片，脫蠟后一張切片用含有淀fen酶的適當緩沖液處理，另一張僅用緩沖液處理。然后兩張切片均用PAS法染色，消化后染色消失表明存在糖原。

操作步驟：（僅供參考）

1. 兩張相同切片，二甲苯脫蠟，梯度乙醇入水。

2. 一張切片滴加淀粉mei溶液室溫處理 20-60min 作陰性對照。另一張浸水保持濕潤即可，無需額外處理。

3. 流水沖洗兩張切片各 2-5min。

4. 滴加氧化劑，室溫放置 5-8min，一般不宜超過 10min。蒸餾水浸洗 2 次，每次 30s。

5. 滴加 Schiff 染色液，置于室溫陰暗處，浸染 10-20min。自來水沖洗 10min。

6. 滴加 Mayer 蘇mu素染色液中，染細胞核 1-2min。

7. (可選)滴加酸性分化液分化 2-5s。

8. 自來水沖洗 10-15min 使其返藍。

9. 常規乙醇脫水，二甲苯透明，中性樹膠封固。

注意事項：

1. 切片脫蠟應盡量干凈，否則影響染色效果。

2. 需使用一張陽性對照片驗證酶的活性。

3. 氧化劑氧化時間不宜過久，氧化時的溫度以 18-22℃最佳。

4. 試劑 A、試劑 B、試劑 C 應置于 4℃密閉保存，使用時避免接觸過多的陽光和空氣。使用前，最好提 前取出恢復到室溫，避光暗處使用。

5. 酸性分化液應經常更換新液，其分化時間應該依據切片厚薄、組織的類別和酸性分化液的新舊而定， 另外分化后自來水沖洗時間應該足夠。

6. 在氧化劑和 Schiff 染色液中作用時間非常重要，該依據切片厚薄、組織的類別等決定。

7. 冷凍切片染色時間盡量要短。

8. 為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。

糖原D-PAS染色試劑盒(淀粉mei消化法) 特殊

產品訂購信息：

NobleRyder G9060 糖原D-PAS染色試劑盒(淀粉mei消化法)，Periodic Acid Schiff Diastase(D-PAS) Stain Kit 5*50ml / 5*100ml